MC-m004-2 小鼠黑色素瘤细胞 B16-F10
Details
细胞介绍 |
该细胞需要使用 1640 培养基
|
---|---|
细胞特性 |
1) 来源:小鼠 器官: 皮肤品系: C57BL/6J 疾病: 黑色素瘤
2) 形态:上皮样,贴壁生长
3) 含量:>1x106 细胞数
4) 规格:T25 瓶或者 1mL 冻存管包装
5) 用途:仅供科研使用。
|
运输和保存 |
干冰运输及复苏好存活细胞:(
1)1mL 冻存管包装干冰运输,收
到后-80 度冰箱保存过夜后转入液氮或直接复苏,若发现干冰已挥发干净、冻存
管瓶盖脱落、破损及细胞有污染,请立即与我们联系。(
2)T25 瓶复苏的存活细
胞常温发货,收到后按照细胞接收后的处理方法操作。
|
细胞接收后的处理 |
1)收到细胞后,75%酒精消毒瓶壁将 T25 瓶置于 37℃培养箱放置约 2-3h,若发
现培养瓶破损、有液溢出及细胞有污染,请拍照后及时联系我们。
2)请在 4 或 5X 显微镜下确认细胞状态,同时给刚收到的细胞拍照(10×,20
×)各 2-3 张以及培养瓶外观照片一张留存,作为售后时收到时细胞状态的依
据。
3)贴壁细胞:细胞在 37℃培养箱中放置 2-3h,显微镜下观察细胞的生长和贴壁
情况,有些贴壁细胞在快递运送过程中会因振动脱落和脱落后成团的情况。若镜
下观察细胞的生长密度若在 60%以下,可去除培养瓶中灌液培养基(若有未贴壁
的细胞需要离心回收,重悬打入到原培养瓶中)
,加入新配制的完全培养基 6-8mL,
放到细胞培养箱中继续培养。若细胞生长密度达 70%-80%以上,可以对细胞进行
传代处理。传代过程中,若因运输振动脱落的细胞需要离心回收。
4)备注:运输用的培养基(灌液培养基)不能再用来培养细胞,请换用按照说
明书细胞培养条件新配制的完全培养基来培养细胞。 收到细胞后第一次传代建
议 T25 培养瓶 1:2 传代 。
|
一.培养基及培养冻存条件准备 |
1)准备 1640 培养基;优质胎牛血清,10%;双抗,1%。
2)培养条件: 气相:空气,95%;二氧化碳,5%。 温度:37 摄氏度,培养
箱湿度为 70%-80%。
3)冻存液:90%血清,10%DMSO,现用现配。
|
二.细胞处理 |
1) 冻存细胞的复苏::
将含有 1mL 细胞悬液的冻存管在 37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入到含 4-6mL 完
全培养基的离心管中混合均匀。在 1000RPM 条件下离心 3-5min,弃去上清液,
完全培养基重悬细胞。然后将细胞悬液加入含6-8ml完全培养基的培养瓶(或皿)
中 37℃培养过夜。第二天显微镜下观察细胞生长情况和细胞密度。2) 细胞传代:如果细胞密度达 80%-90%,即可进行传代培养。
对于贴壁细胞传代可以参考以下方法:
1. 弃去培养上清,用不含钙、镁离子的 PBS 润洗细胞 1-2 次。
2. 加入 0.25%(w / v)胰蛋白酶-0.53 mM EDTA 于培养瓶中(T25 瓶 1-2mL,T75
瓶 2-3mL),置于 37℃培养箱中消化 3-5 分钟(难消化的细胞可以适当延长消化
时间),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿
回操作台,轻敲几下培养瓶后加入 3-4ml 含 10%FBS 的培养基来终止消化。
3.轻轻打匀后吸出,在 1000RPM 条件下离心 3-5min,弃去上清液,补加 1-2mL
培养液后吹匀。将细胞悬液按 1:2 的比例分到新 T25 瓶中,添加 6-8ml 按照
说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力,后续传代根据实际
情况按 1:2~1:5 的比例进行。
3)细胞冻存: 收到细胞后建议在培养前 3 代时冻存一批细胞种子以备后续实验
使用。下面 T25 瓶为例;
1. 细胞冻存时按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中,可使用血
球计数板计数,来决定细胞的冻存密度。一般细胞的推荐冻存密度为 1×106~1
×107 个活细胞/ml.
2. 1000rpm 离心 3-5min,去掉上清。用配制好的细胞冻存液重悬细胞 ,按每
1ml 冻存液含 1×106~1×107 个活细胞/ml 分配到一个冻存管中将细胞分配到
冻存管中,标注好名称、代数、日期等信息。
3. 将要冻存的细胞置于程序降温盒中,-80 度冰箱中过夜,之后转入液氮容器
中储存。同时记录好冻存管在液氮容器中的位置以便后续查阅和使用。
|
注意事项 |
1. 所有动物细胞均视为有潜在的生物危害性,必须在二级生物安全台内操作,并
请注意防护,所有废液及接触过此细胞的器皿需要灭菌后方能丢弃。
2. 建议在复苏冻存细胞时始终使用防护手套、衣服和戴上防护面罩。注意:冻存
管浸没在液氮中会泄漏,并会慢慢充满液氮。解冻时,液氮转化成气相可能导致
容器爆炸或用危险力吹掉其盖子,从而产生飞扬的碎屑造成人员伤害。
|
参考文献 |
Fidler IJ. Biological behavior of malignant melanoma cells correlated to their survival in vivo.
Cancer Res. 35: 218-224, 1975. PubMed: 1109790 Fidler IJ, et al. Tumoricidal properties of
mouse macrophages activated with mediators from rat lymphocytes stimulated with
concanavalin A. Cancer Res. 36: 3608-3615, 1976. PubMed: 953987 Fidler IJ, Bucana C.
Mechanism of tumor cell resistance to lysis by syngeneic lymphocytes. Cancer Res. 37: 3945-
3956, 1977. PubMed: 908034 Fidler IJ, Kripke ML. Metastasis results from preexisting variant
cells within a malignant tumor. Science 197: 893-895, 1977. PubMed: 887927 Briles EB,
Kornfeld S. Isolation and metastatic properties of detachment variants of B16 melanoma
cells. J. Natl. Cancer Inst. 60: 1217-1222, 1978. PubMed: 418183 Nat. New Biol. 242: 148-
149, 1973.
|